martes, 30 de octubre de 2012

2.3.7.4 Manejo Del Material Trasplantado


 Debe prestarse atención especial al realizar el trasplante durante periodos estresantes para reducir daños a la planta, en especial al sistema de raíces o cepellón. El daño a las raíces reduce las posibilidades de éxito en el establecimiento de la planta, particularmente en melones, pepinos y calabacita. Se recomienda impartir capacitación al equipo que realice el trasplante para minimizar el daño a las plántulas. Si resulta difícil extraer las plantas de las charolas y sus raíces no están intactas, las plantas no sobrevivirán condiciones meteorológicas adversas.


BIBLIOGRAFIA:


2.3.7.3 Trasplante y Adaptación bajo Condiciones De Invernadero



Problemas de adaptación
Algunos problemas de adaptación se producen cuando los trasplantes son producidos en invernadero en regiones cálidas y no son expuestos al exterior hasta el día del transporte. Pero los trasplantes producidos localmente también son vulnerables al shock o colapso del trasplante si se trasladan directamente del invernadero al campo sin haber experimentado un periodo de adaptación. Y aun si se someten a dicho periodo, en condiciones de vientos fuertes, las plántulas pueden resecarse rápidamente si se dejan en el campo, particularmente si no existen rompevientos adecuados.
Conviene recordar que los trasplantes de hortalizas de temporada cálida difieren en su habilidad para resistir condiciones óptimas dependiendo del proceso de adaptación y de su capacidad inherente para resistir estrés. Tomates, pepinos, y calabacitas son más adecuados para resistir estrés que melones cantaloupe, sandías, o chiles y pimientos.
Las temperaturas del suelo son un factor clave en el establecimiento de los cultivos de temporada cálida. Es importante tender el plástico con antelación al trasplante y contar con la humedad del suelo adecuada para absorber y retener calor. Cuando las temperaturas del suelo son muy bajas, el crecimiento radicular es mínimo en estos cultivos y se demora el crecimiento y enraizado de las plántulas. Insectos y enfermedades pueden estresar a los trasplantes y reducir su capacidad de soportar inclemencias meteorológicas.

Para evitar el shock del trasplante, se recomienda seguir las pautas a continuación:Cómo evitar el shock

• Sistemas radiculares desarrollados. Aasegúrese de que las plantas tienen sistemas radiculares bien desarrollados. Las plántulas deben ser fácilmente extraíbles de las charolas y tener un cepellón bien formado. No trasplante plantas al campo si éstas no cuentan con raíces bien desarrolladas.
• Proceso de adaptación. Los trasplantes deben haber pasado por un proceso de adaptación mediante su exposición a condiciones exteriores, eliminando fertilizante y controlando el riego con antelación al trasplante en campo. Las plantas demasiado altas y finas serán un problema en condiciones de estrés, por lo que no deben utilizarse. Estas plantas son más vulnerables al daño en el trasplante y a los efectos del viento, lo que incrementará su nivel de estrés.
• Condición del suelo. Es importante asegurarse de cubrir completamente el cepellón y de que la raíz no esté expuesta a resecamiento al plantar la plántula. Sin embargo, en el caso de cultivos tales como sandía y cantaloupe, hay que asegurarse de que la tierra no rodee el tallo. Realizar una plantación profunda en suelos húmedos y fríos podría resultar en estrés adicional en estos cultivos.
• Tiempo de plantación. Debe prestarse atención especial al realizar el trasplante durante periodos estresantes para reducir daños a la planta, en especial al sistema de raíces o cepellón. El daño a las raíces reduce las posibilidades de éxito en el establecimiento de la planta, particularmente en melones, pepinos y calabacita. Se recomienda impartir capacitación al equipo que realice el trasplante para minimizar el daño a las plántulas. Si resulta difícil extraer las plantas de las charolas y sus raíces no están intactas, las plantas no sobrevivirán condiciones meteorológicas adversas.
• Condiciones meteorológicas. Evite plantar si las condiciones meteorológicas son desfavorables. Observe el pronóstico para los próximos días y plante cuando vea una tendencia con subida de temperaturas y ausencia de vientos o vientos moderados. Si se esperan vientos fuertes o noches frías, es mejor esperar a que se produzcan condiciones más favorables. La experiencia ha demostrado que no se gana tiempo al plantar más temprano en la temporada si las condiciones son adversas.
• Protección adicional. Si el tiempo meteorológico es desfavorable, conviene además utilizar cubiertas en las hileras para proteger las plantas. Los rompevientos son críticos en plantaciones tempranas. Utilice rompevientos entre cada cama de cultivo en plantaciones tempranas, y rompevientos entre múltiples camas para plantaciones tardías. Si los rompevientos no son adecuados para su zona de cultivo, es aconsejable que posponga la fecha de plantación hasta que se observe buen tiempo en el pronóstico meteorológico.

BIBLIOGRAFIA:

2.3.7.2 Desinfección o Esterilización del Sustrato

Se proporciona un proceso para limpiar, desinfectar y esterilizar sustratos que comprende los pasos de: a)colocar el sustrato contaminado en un recipientede limpieza; b)poner en contacto el sustrato..
contaminado en un recipientede limpieza; b)poner en contacto el sustrato contaminado con dióxido de carbono de fase densa que se presenta en forma líquida; c)someter el sustrato y eldióxido de carbono de fase densa a la radiación ultravioleta que tenga una longitud de onda en el rango de entre 180 y 300nm durante un tiempo de duración ycon una intensidad suficientes paraproducir una reacción fotoquímica que pueda destruir el adn de los microorganismos del sustrato; d)someter en formasustancialmente simultánea por lo menos el dióxido de carbono de fase densa de agitación; y e)eliminar el dióxido de carbono de fase densa del recipiente delimpieza, con lo cual se transportan los contaminantes desde el sustrato, de manera tal que el sustrato resulta limpio, y en el caso de prendas contaminadasquedan desinfectadas, mientras que en el caso de instrumental de uso médico o dental queda esterilizado. En forma sustancialmente simultánea a la exposición alos rayos uv y a la agitación, los sustratos también se someten a un esterilante oxidante, tal como h2o2.

La presente invención se refiere a una composición para desinfectar sustratos y formar una barrera protectora que comprende dos materiales gelatinosos adaptados para ser mezclados y aplicados de tal forma que se adhieran a un sustrato, el primer material gelatinoso comprendiendo una solución acuosa que contiene cantidades adecuadas de un ácido prótico y el segundo material gelatinoso comprendiendo un clorito metálico tal que, cuando los materiales gelatinosos son combinados, la concentración de ión clorito en forma de ácido cloroso no es mayor que aproximadamente 15 por ciento en peso de la cantidad total de concentración de ión clorito, y en donde el segundo material gelatinoso tambien comprende un ácido polisulfónico, en donde el anión de dicha sal tiene la fórmula: en donde X tiene el valor del peso molecular de la porción aniónica del polímero es de aproximadamente 1,000,000 a aproximadamente 5,000,000.

BIBLIOGRAFIA: 

2.3.7.1 Tipos de Sustrato


 
Tipos de sustratos

Algunos de los tipos de tierras mas comúnmente utilizados hoy en día por los aficionados en la preparación de sustratos son:

Arcillas: Se trata de silicatos de aluminio hidratados, con más o menos impurezas según el tipo. 

-Vermiculita: Es un material semi-artificial sometido a altas temperaturas que en su forma natural es una mica de color pardo y de estructura laminar. Es un silicato alumínico-magnésico. Se trata de una tierra de Ph algo alcalino, entre 7 y 7,2.

-Lutita: Es una arcilla que no se hincha al absorber agua. Es blanda y en función de su contenido de hierro y materia orgánica puede ser negra, gris o roja. Su Ph es ligeramente ácido.

-Kanuma: Se trata de una arcilla de PH bastante ácido, se trata del sustrato ideal para azaleas, a fin de cuentas es la tierra nativa de estas en el Japón, y en general todo tipo de plantas acidófilas.

-Sepiolita: Arcilla de color gris claro y Ph algo básico. Resulta muy blanda al humedecerse perdiendo su consistencia con relativa facilidad. En ocasiones se añade una pequeña cantidad a la mezcla típica de akadama para su uso con árboles que gustan de suelos ligeramente alcalinos, como los juníperos.

-Kiriuzuma, kiriu: Tierra arcillosa tipo limonita, con un alto contenido férrico. Es un sustrato ideal para pináceas.

-Akadama: Arcilla de origen japonés sometido a altas temperaturas.
 La akadama natural es un pequeño grano de volcánica recubierto de arcilla, mientras que la que se puede encontrar comercialmente no es mas que el polvillo arcilloso resultante de la manipulación de la versión natural, prensado y sometido a altas temperaturas, para formar granos de diferentes tamaños. El resultado resulta más económico que la versión natural, y es completamente estéril (algo interesante a la hora de exportar), pero como es cien por cien arcilla conviene mezclarlo con un material pétreo, por ejemplo volcánica. Su Ph es mas o menos neutro, aunque con una cierta tendencia a resultar ligeramente ácido (oscila entre 6,5 y 6,9).

BIBLIOGRAFIA:

2.3.7 Trasplante al Sustrato


 trasplantes  a sustrato
El trasplante  se debe dar  mediante  a climatización     una planta   demora   entre  4  a 8  semanas
1.     Se controla  la luz  desde el  20  hasta 100%
2.     Sustrato  en las 2  primeras semanas 
3.     Hr  se mantiene   alta  desde  100% normal     mediante   agua   nebulizadora
4.     Normalmente  se  corta   las raizes   de las   plantas  inviltro   para  que  las regenerre de nuevo  o  genere sus  propias  raizes   o tambie se  puede agregar  enraizador.


2.3.6.4 Preadaptacion y Trasplante


 Pre-adaptación de plántulas: En algunas ocasiones, el número de plantas recibidas de una sola vez fue muy alto y la capacidad disponible de mano de obra no permitió una manipulación rápida del material, debiendo permanecer varios días en las cajas. En estas condiciones se observó una tasa de mortalidad alta. Cuando esto sucede, se recomienda guardar los frascos en un lugar fresco y con luz adecuada, durante 1 ó 2 días. En este período se retira la cinta plástica que rodea la tapa de los frascos para aclimatar la plántula a las condiciones del lugar. Se aconseja que todo el proceso del transplante se inicie a partir de las 4:00 p.m., todos los días, con el fin de evitar la deshidratación de las plántulas, especialmente si el trabajo se realiza en una casa de malla.

c.- Substrato para el transplante: Los mejores resultados que se obtuvieron en el proyecto, en cuanto al sustrato a usar para el endurecimiento, fueron con la mezcla de 1 parte de suelo molido o zarandeado (capa arable no arcillosa) y tres partes de arena (arena gruesa lavada).

En todos los casos, el sustrato fue esterilizado a vapor para minimizar riesgos de presencia de hongos y nematodos del suelo. En caso de que no se cuente con el equipo de “esterilización” se puede depositar la arena en una caneca metálica que contenga agua y, posteriormente, someterla a calor. Respecto del suelo, se puede extender una delgada capa de suelo en un plástico, cubrirla con otro plástico negro en forma hermética y dejarla una semana expuesta al sol.

BIBLIOGRAFIA: 


2.3.6.3 Enraizamiento


La última fase del proceso de micropropagación, llamada Fase 3, incluye los procesos de enraizamiento de la microestaquillas obtenidas en la Fase 2 de multiplicación y su aclimatación a las condiciones ex vitro.
Es una práctica corriente realizar in vitro el enraizamiento de la microestaquillas, pero esto produce problemas en muchas ocasiones. Así, Grout y Aston [Hort. Res., 17, 1 (1977)] observaron como tras el enraizamiento in vitro de sus plantas la zona de transición entre la raíz y el tallo era anormal, con unas conexiones vasculares débiles y malformadas, lo que producía problemas en la absorción y circulación de agua desde las raíces al tallo. Esta disfunción se corrige, al menos parcialmente, tras una adecuada aclimatación. En otras ocasiones el problema estriba en que las raíces que crecen en agar son defectuosas, carecen de pelos radicales y suelen necrosarse al transplantar las plántulas, lo que provoca una parada en el crecimiento de la planta [(Deberg y Maene, Scientia Hort., 14, 335 (1981)]. Tambien se ha observado como las raíces formadas in vitro eran gruesas y con pelos radicales engrosados y anormales, siendo sus sistemas vasculares anómalos, en comparación con raíces formadas en un sustrato arenoso. En las raíces que no mueren durante el proceso de transplante se producen nuevas raíces laterales y adventicias normales durante el proceso de aclimatación y estas ya crecen activamente. Por ello la razón raíz : tallo siempre es más alta en plantas enraizadas ex vitro que in vitro.
Todos estos factores hacen que muchos de los laboratorios que trabajan produciendo plantas in vitro, no realicen el enraizamiento de la microestaquillas in vitro, al resultar problemático, difícil y caro, ya que el proceso de enraizamiento in vitro se estima que implica un costo de entre el 35-75% del coste total de la micropropagación. Por supuesto, no es posible generalizar, ya que la elección del método de enraizamiento va a depender totalmente de la especie y de sus características: porcentajes de enraizamiento y supervivencia final, que varían enormemente de unas especies a otras. Así, cuando el enraizamiento y aclimatación se pueden realizar simultaáneamente, sin que haya demasiada pérdida de plantas, tanto los costes como la eficiencia de la producción se ven muy favorecidos.
Entre los factores a considerar en el enraizamiento de microestaquillas tanto in vitro como ex vitro están el tamaño de la microestaquilla, su cobertura foliar, los reguladores de crecimiento utilizados en la inducción, y las condiciones medioambientales de temperatura, luz y humedad.

BIBLIOGRAFIA
La última fase del proceso de micropropagación, llamada Fase 3, incluye los procesos de enraizamiento de la microestaquillas obtenidas en la Fase 2 de multiplicación y su aclimatación a las condiciones ex vitro.
Es una práctica corriente realizar in vitro el enraizamiento de la microestaquillas, pero esto produce problemas en muchas ocasiones. Así, Grout y Aston [Hort. Res., 17, 1 (1977)] observaron como tras el enraizamiento in vitro de sus plantas la zona de transición entre la raíz y el tallo era anormal, con unas conexiones vasculares débiles y malformadas, lo que producía problemas en la absorción y circulación de agua desde las raíces al tallo. Esta disfunción se corrige, al menos parcialmente, tras una adecuada aclimatación. En otras ocasiones el problema estriba en que las raíces que crecen en agar son defectuosas, carecen de pelos radicales y suelen necrosarse al transplantar las plántulas, lo que provoca una parada en el crecimiento de la planta [(Deberg y Maene, Scientia Hort., 14, 335 (1981)]. Tambien se ha observado como las raíces formadas in vitro eran gruesas y con pelos radicales engrosados y anormales, siendo sus sistemas vasculares anómalos, en comparación con raíces formadas en un sustrato arenoso. En las raíces que no mueren durante el proceso de transplante se producen nuevas raíces laterales y adventicias normales durante el proceso de aclimatación y estas ya crecen activamente. Por ello la razón raíz : tallo siempre es más alta en plantas enraizadas ex vitro que in vitro.
Todos estos factores hacen que muchos de los laboratorios que trabajan produciendo plantas in vitro, no realicen el enraizamiento de la microestaquillas in vitro, al resultar problemático, difícil y caro, ya que el proceso de enraizamiento in vitro se estima que implica un costo de entre el 35-75% del coste total de la micropropagación. Por supuesto, no es posible generalizar, ya que la elección del método de enraizamiento va a depender totalmente de la especie y de sus características: porcentajes de enraizamiento y supervivencia final, que varían enormemente de unas especies a otras. Así, cuando el enraizamiento y aclimatación se pueden realizar simultaáneamente, sin que haya demasiada pérdida de plantas, tanto los costes como la eficiencia de la producción se ven muy favorecidos.

BIBLIOGRAFIA:
Entre los factores a considerar en el enraizamiento de microestaquillas tanto in vitro como ex vitro están el tamaño de la microestaquilla, su cobertura foliar, los reguladores de crecimiento utilizados en la inducción, y las condiciones medioambientales de temperatura, luz y humedad.



2.3.6.2 Crecimiento de Yemas Adventicias


Yemas adventicias

Se forman sin relación con los meristemas apicales sobre raíces, tallos, hipocótilos y  hojas.  Las hojas de Kalanchoe forman yemas adventicias en las escotaduras del margen foliar. 
Pueden ser superficiales, formándose en la epidermis o profundas, en tejidos corticales o cámbium. En algunas plantas son yemas floríferas.


BIBLIOGRAFIA:

2.3.6.1 Formación de Callo


Callo: masa de células parenquimáticas, que se desarrolla en una superficie  cortada. Ocurre en la unión de un injerto, originándose de las células del vástago y del pie. 
La producción e interconección de estas células constituye uno de los pasos más importantes en la formación del callo que dará como resultado  un injerto exitoso. 

2.3.6 Cambios Fisiológicos del Explante


   Temperatura    18 .25 normal  en cultivo de tejido  Polaridad     se debe   conservarse   la  polaridad   de la  planta madre  Fase gaseosa   cuando  se sella lo  queda dentro  es la  fase  gaseosa  el  gas  tiene  es el que van utilizar   para realizar  fotosíntesis   Humedad debe se 100%   la humedad   relativa   que  existe   dentro  de los  fases con  el  medio de cultivo  es alta.

Natural
El parénquima  esta organizado y eficiente
Los estoma funciona  bien                                                      
Las raíz mas gruesa
La  cutícula   es gruesa
h.r  70%


inviltro
parquísima esta desorganizado  ineficiente
estoma  no funciona   al 100%
el agar  puede provocar   hinchamiento del tejido
epidermis  desorganizada  
raíces  mas delgada
cutícula  mas delgada
t* 25c
h.r 100%

BIBLIOGRAFIA:

2.3.5.4 Humedad Relativa


Se denomina humedad ambiental a la cantidad de vapor de agua presente en el aire. Se puede expresar de forma absoluta mediante la humedadabsoluta, o de forma relativa mediante la humedad relativa o grado de humedad. La humedad relativa es la relación porcentual entre la cantidad de vapor de agua real que contiene el aire y la que necesitaría contener para saturarse a idéntica temperatura, por ejemplo, una humedad relativa del 70% quiere decir que de la totalidad de vapor de agua (el 100%) que podría contener el aire a esta temperatura, solo tiene el 70%.

BIBLIOGRAFIA:
http://es.wikipedia.org/wiki/Humedad


2.3.5.3 Temperatura



La temperatura es una magnitud referida a las nociones comunes de caliente, tibio, frío que puede ser medida, específicamente, con un termómetro
En física, se define como una magnitud escalar relacionada con la energía interna de un sistema termodinámico, definida por el principio cero de la termodinámica. Más específicamente, está relacionada directamente con la parte de la energía interna conocida como «energía cinética», que es la energía asociada a los movimientos de las partículas del sistema, sea en un sentido traslacional, rotacional, o en forma de vibraciones. 
A medida de que sea mayor la energía cinética de un sistema, se observa que éste se encuentra más «caliente»; es decir, que su temperatura es mayor.
En el caso de un sólido, los movimientos en cuestión resultan ser las vibraciones de las partículas en sus sitios dentro del sólido. En el caso de un gas ideal monoatómico se trata de los movimientos traslacionales de sus partículas (para los gases multiatómicos los movimientos rotacional y vibracional deben tomarse en cuenta también).
El desarrollo de técnicas para la medición de la temperatura ha pasado por un largo proceso histórico, ya que es necesario darle un valor numérico a una idea intuitiva como es lo frío o lo caliente.

2.3.5.2 Intensidad Lumínica


La candela (símbolo cd) es la unidad básica del SI de intensidad luminosa en una dirección
dada, de una fuente que emite una radiación monocromática de frecuencia 540 × 1012
hercios y de la cual la intensidad radiada en esa dirección es 1/683 vatios por estereorradián.
Esta cantidad es equivalente a la que en 1948, en la conferencia general de pesos y
medidas, se definió como una sexagésima parte de la luz emitida por un centímetro
cuadrado de platino puro en estado sólido a la temperatura de su punto de fusión (2046
K).
SIEMENS (S) (UNIDAD DE CONDUCTANCIA ELÉCTRICA)
Definición: un siemens es la conductancia eléctrica que existe entre dos puntos de un
conductor que tiene un ohmio de resistencia.
WEBER (WB) (UNIDAD DE FLUJO MAGNÉTICO)
Definición: un weber es el flujo magnético que al atravesar un circuito de una sola espira
produce en la misma una fuerza electromotriz de 1 voltio si se anula dicho flujo en 1

BIBLIOGRAFIA:

2.3.5.1 Fotoperiodo


Se denomina fotoperiodo al conjunto de procesos de las especies vegetales mediante los cuales regulan sus funciones biológicas (como por ejemplo su reproducción y crecimiento) usando como parámetros la alternancia de los días y las noches del año y su duración según las estaciones y el ciclo solar.
El fotoperiodo, por lo tanto, son los cambios de iluminación que reciben las plantas, que pueden modificar su germinación. En el mundo vegetal la luz, su duración y periodicidad, tiene una gran influencia sobre la germinación y la duración del crecimiento vegetativo. El desarrollo de las plantas puede ser activado o nó dependiendo del número de horas de luz recibídas. Algunos árboles necesitan un número determinado de horas de luz al día para que su metabolismo funcione, pero cuando llega el otoño los días son más cortos, y al no recibir las horas de luz que necesitan, su crecimiento se detiene y entran en una fase de reposo.
El mismo mecanismo también es válido para los animales. En las zonas donde las condiciones ambientales son favorables la mayor parte del año. Por ejemplo en latitudes ecuatoriales, los animales inician su actividad sexual cuando estos factores son propicios: alimentación, temperatura, presencia de individuos del sexo opuesto, etc. Por el contrario, en otras zonas del planeta es necesario criar a los animales jóvenes durante épocas más concretas del año, lo que ha conducido a la mayoría de las especies salvajes a limitar el período de nacimentos ( por ejemplo mediante la interrupción de la ovulación y el estro) cuando el clima es menos rígido y la disponibilidad de alimentos es abundante.
Para poder reconocer estas señales, la plantas tienen pigmentos como fitocromos que transducen estas señales desde el ambiente externo. La estructura de los fitocromos es modificada por la luz roja y la luz roja lejana y estos eventos dan lugar a una cascada de acontecimientos que llevan a la producción de promotor o inhibidor floral.
Varias actividades de las plantas, como producción de flores, están determinadas por la longitud del día; por esta razón las plantas se pueden clasificar a partir de sus respuestas al fotoperiodo. Las plantas de días cortos florecen solo en días cortos o la producción de flores es acelerada en días cortos. Las plantas de días largos florecen solo en días largos y la producción de flores es acelerada en días largos. También existen plantas que no responden al fotoperiodo, estas plantas son llamadas plantas neutrales al día y florecen por mecanismos de regulación autónomos.

BIBLIOGRAFIA :

2.3.5 Condiciones de Incubación


Iluminación:  Composición espectral, irradiancia, fotoperiodo.
1-Temperatura
2-Humedad 
3-Disponibilidad de agua 
4-Ventilación  

BIBLIOGRAFIA:

http://www.slideshare.net/pa47484/biotecnologia-2862397

2.3.4.3 Siembra de Diferentes Medios Sólidos y líquidos


Una forma muy útil de poder aislar, identificar y conservar los microorganismos es mediante el uso de medios de cultivo, inicialmente ideados por Pasteur (que como ya sabemos se considera el padre de la microbiología), quien se dio cuenta que los microorganismos podían crecer en soluciones que tuvieran azúcar y una fuente de nitrógeno.

De ese tiempo hasta acá, ha pasado mucha agua debajo del puente y actualmente existen medios muy especializados para microorganismos muy exigentes. La forma más sencilla de clasificar los medios de cultivo es por su consistencia…entonces aparecen los medios de cultivo sólidos y los medios de cultivo líquidos o también llamados caldos. En ambos medios debe haber una buena cantidad de nutrientes que faciliten el crecimiento bacteriano… y entonces cual es la diferencia?….pues la diferencia radica en la presencia de una sustancia que se llama Agar o “Agar-Agar” y que es la encargada de darle la solidez  y consistencia al medio. Esta sustancia proviene, principalmente, de un alga llamada Gelidium, aunque muchos otros géneros pueden servir como fuente de este polisacárido (es decir, un azúcar grande formado por la unión de azúcares pequeños). Y como se obtiene del alga?…Se toman sus semillas, se lavan, se secan, se realizan procesos de extracción, filtración, purificación y desecación para que queden hojuelas o polvo y luego si adicionarla al medio de cultivo.
Fue, Robert Koch, médico alemán dedicado al estudio de los microorganismos y considerado uno de los autores de la “teoría microbiana”, quien empezó a cultivar y aislar microorganismos. Koch, buscando mejorar la técnica utilizada hasta ese momento, decidió solidificar los medios de cultivo añadiéndoles gelatina. Sin embargo, y a sugerencia de una ayudante, introdujo el agar.

BIBLIOGRAFIA:

2.3.4.2 Disección del Explante

2.3.4.1 Desinfección del Explante



Desinfección del explante:  Se enjuaga con agua jabonosa y desinfecta superficialmente con  hipoclorito de sodio al 10% 15 minutos. Se enjuaga con agua estéril tres veces.
Medio de cultivo para el establecimiento MS modificado: caseína hidrolizada (1 g/l); extracto de levadura (1 g/l); ácido giberélico (0,5 mg/l); IBA (1 mg/l); ácido cítrico (100 mg/l); agua de coco (5%); sacarosa (30 g/l).
condiciones de incubación: se realiza en medio líquido sobre puente de papel de filtro. Se agita diariamente durante una hora. Cada 24 h. Se transfiere a medio fresco.  A partir del día 10 los cambios de medio se realizan cada 6 días.  26± 2 ºC, luz continua, intensidad 1000 lux. Duración del establecimiento: 3 meses.
Cuando los vástagos alcanzan 1,5  cm. de longitud los vástagos se transfieren al medio: Medio de intermedio antes de pasar a la etapa de multiplicación: Medio de cultivo para el establecimiento: MS  modificado: caseína hidrolizada (1 g/l); extracto de levadura (1 g/l); kinetina (0,1 mg/l); IBA (1 mg/l); ácido cítrico (100 mg/l); agua de coco (5%); sacarosa (30 g/l); agar (5g/l). Los repiques se realizan cada 5 días.



BIBLIOGRAFIA:

2.3.4 Siembra Del Explante



Para sembrar un explante el primer paso es tomar un frasco con medio de cultivo se quita el sello, después con una pinza estéril se toma el explante se coloca dentro del medio de cultivo,quedando que la yema quede hacia arriba, tomando en cuenta la polaridad de la planta madre; ya que puede llegar a suceder una polaridad invertida  la cual va a depender de los ápices, raíces  hojas, semillas, tallos y yemas en que se siembra la planta..  


BIBLIOGRAFIA:

2.3.3.3 Tamaño del Explante


 En general, cuanto más grande sea el explante mayores serán las posibilidades de inducir la proliferación de callos o la regeneración directa de órganos. Sin embargo, a mayor tamaño de explante también son mayores las probabilidades de que los cultivos se contaminen con microorganismos. También es necesario tener en cuenta que existe un tamaño mínimo del explante, que depende de la especie y del material vegetal, por debajo del cual no es fácil lograr el establecimiento de los cultivos. Los explantes muy pequeños suelen requerir del empleo de medios más complejos o de los denominados medios acondicionados.


BIBLIOGRAFIA:

2.3.3.2 Posición del Explante en La Planta



Los explantes se incubaron en oscuridad total a 26 °C y 50 % de humedad relativa.
Las variables de respuesta para este experimento fueron: porcentaje de explantes con capacidad de respuesta morfogénica, expresada en crecimiento de los bordes del explante; porcentaje de explantes con callogénesis; y porcentaje de explantes con callo embriogénico, esta última detectada con base en la presencia de embriones en diferentes estados de desarrollo (fase globular, acorazonado, torpedo y cotiledonar), en una muestra de 0.83 g de callo. La evaluación de las variables se llevó a cabo a los 60 d del establecimiento in vitro.



2.3.3.1 Tipo de Explante


El tipo de explante a usarse en los procesos de micropropagación depende de la especie con la que se esté trabajando y de los objetivos que se persigan. Explantes como los meristemos apicales y las yemas axilares son genéticamente muy estables, este tipo de explantes sirve para reproducir múltiples clones de una forma o variedad con características especiales que se desea mantener en el cultivo. Otros explantes como las yemas adventicias son mas bien genéticamente inestables y producen un alto grado de variabilidad en los clones, este procedimiento no es útil para la producción de plántulas con una determinada característica de cultivo, pero si lo es para el fitomejoramiento, ya que mediante esta variación semi–natural, es posible obtener nuevas líneas de cultivo. 
Una vez que se ha obtenido el Explante  este debe ser correctamente desinfectado para evitar la proliferación de contaminantes biológicos (bacterias, hongos y levaduras principalmente) en el medio, los cuales afectan el crecimiento y desarrollo del explante (Fontúrbel 2001) y compiten con el mismo deteriorándolo y haciéndolo inservible para cultivo (Kyte & Kleyn 1996). 

Los explantes desinfectados son trasladados a una cámara de flujo laminar (con aire filtrado, libre de microorganismos) donde se realizará la transferencia a un medio de cultivo apropiado (Kyte & Kleyn 1996) al tipo de especie y las necesidades del cultivo. Una vez que el explante está en el medio, se sella el rasco de cultivo y se traslada a una cámara de crecimiento con condiciones de humedad, temperatura y fotoperiodo controladas para su desarrollo. 

Una vez que los explantes –luego de algunas semanas en la cámara de crecimiento– han desarrollado algunas raíces y hojas, es el momento de realizar el traspaso al invernadero. Este es uno de los pasos más difíciles de la técnica, ya que los explantesin vitro se encuentran en condiciones ambientales muy diferentes y se alimentan de manera heterotrófica (del medio de cultivo) y el estrés de adaptación a las condiciones de vivero es muy fuerte (Kyte & Kleyn 1996, Fossard 1999). Un porcentaje de las plántulas clonadas in vitro no sobrevive al invernadero, pero la parte que si sobrevive crece –ya en condiciones normales– y al cabo de una semanas está lista para ser trasladada al campo de cultivo.

BIBLIOGRAFIA:



2.3.3 Explante




El tejido explantado deriva de una parte de la planta que tenga por se un crecimiento rápido o que en un estadio temprano de su desarrollo. Si los explantes se extraen de regiones progresivamente mas viejas, puede observarse un gradiente de descenso de la capacidad de producir callos in vitro. Estas diferencias pueden mantenerse de manera estable pero que no se creen el resultado de ningún tipo de diferencia genética dentro de la planta, se han descrito anteriormente como epigenéticas. Las células habituadas poseen la capacidad de poder ser cultivadas en ausencia de auxinas o de citoquininas. Sin embargo, el éxito de la micropropagación no solo depende de la selección del mejor Explante  sino también del mejor medio de cultivo para dicho órgano o tejido.


BIBLIOGRAFIA:

2.3.2.5 Edad del Órgano o Tejido Vegetal



Definitivamente dentro de nuestros proyectos agropecuarios es fundamental conocer temas relacionados con la biotecnología vegetal.
Por ejemplo, según los experimentos realizados por Toivonenn ty Kartha, en 1988, quienes trabaron con Pinus glauca, descubrieron que las plántulas a las que se les extirpo los cotiledones 7 a 8 días luego de ser plantadas, formaban las primeras yemas adventicias antes que plántulas cuyas yemas fueron extirpadas luego de los 8 días.
Así también la producción de yemas adventicias en explantes de hojas de Cucumis melo, mostraron mayor producción en los explantes que tenían un tamaño entre 0.3 y 0.5 mm los cuales tenían 14 días de plantados.
Esta propiedad no tenía aquellos explantes que tenían más de 21 días.
La edad del explante puede clasificarse en cuatro clases:
. Edad del órgano o de la planta que ha sido extraída: es la edad biológica de la planta, es el tiempo que transcurrido desde que la planta comenzó como retoño o como embrión.
. Edad fisiológica o ontogenética: o fase de crecimiento. Incluye los conceptos de juvenilidad y adulto.
. El grado de diferenciación: con este concepto, las partes mas jóvenes de la planta son células meristemáticas no diferenciadas.
Teóricamente se dice que algunas plantas poseen las células meristemáticas siempre en estado juvenil y que podrían vivir para siempre.
. Periodo de cultivo: es el tiempo desde que recién se instala el cultivo

BIBLIOGRAFIA:

2.3.2.4 Condiciones De Crecimiento De una Planta



El crecimiento de los callos y de las células en suspensión, presenta una serie de fases de crecimiento que se caracterizan por tener naturaleza sigmoidal, cada fase se diferencia a la otra, por que presenta cambios en el peso seco, o en él numero de células, en función al tiempo. Estas fases son:

«  Fase de latencia.- Esta fase se inicia cuando la célula es transferida al medio en que se va a cultivar. Esta célula inicia los procesos metabólicos de división celular, es decir, mitosis. Hay una gran producción de NAD(P)H y ATP, es decir, el sistema energético de la célula se activa, las rutas glicoliticas y pentosas fosfatos producen poder reductor.

Estos procesos suceden conforme a los carbohidratos, aportados normalmente como sacarosa. Además, se incrementa la cantidad de ácidos nucleicos y de proteínas debido, en parte, a una más eficiente capacidad de translación de los ribosomas. Se incrementa la actividad de la enzima invertasa, asociada con la síntesis de la pared celular, y el contenido de RNA celular.

También se ha observado que se incrementa la actividad de la enzima fenilalanina amonio liasa. Se ha observado también que el nivel de estado de estacionario de RNAs mensajero, se incrementa al pasar las células cultivadas de un medio carente de 2,4D (2,4 diclorofenoxiacetico) y NAA (Acido α – naftalenacetico) a otro que si lo presentaba.

«  Fase de división celular.- Una vez que la célula ha sido inducida a la división celular, esta ocurrirá hasta que uno o más nutrientes comiencen a ser limitante. El aumento en el número de células precede generalmente al incremento del peso fresco debido al retraso del aumento del tamaño de la célula.

Llega un momento en que la actividad respiratoria se incrementa significativamente (medida como consumo de O2) y los niveles de estado estacionario de RNA durante los tres primeros días de cultivo, suben hasta en un 90%, pero hay una disminución de los niveles de RNA por célula a causa de del menor tamaño de estas células divididas.  Se produce un incremento en el nitrógeno insoluble en alcohol y de la absorción de oxigeno, a medida que procede la proliferación celular.

 Durante la fase lineal del crecimiento, permanece constante el tamaño celular. La tasa de síntesis de proteínas y ácidos nucleicos permanece relativamente elevadas.

 Las células en suspensión, muestran escasa diferenciación (citodiferenciacion u organización celular) aparentemente en las fases exponencial y lineal, semejante la mayoría de ellas a las células meristematicas de ápice de tallo.
 Como reflejo de este proceso de desdiferenciacion esta la limitacion impuesta en la actividad metabólica secundaria comúnmente confiada a la fase estacionaria. En los cultivos celulares de Hacer pseudoplatanus se demostró la incorporación de aminoácidos radiactivamente marcados (precursores comunes de proteínas y compuestos fenolicos)


«  Fase estacionaria.- Esta fase se caracteriza por una disminución en la división celular, actividad respiratoria, síntesis de RNA y proteínas y por un aumento de la proporción de células vacuoladas. Así también disminuye la actividad de enzimas claves del ciclo de las pentosas fosfatos.

La diferenciación estructural y la diferenciación bioquímica en la fase estacionaria se han descrito también por cambios en las actividades de sistemas enzimáticos particulares.

En algunas especies cultivadas, en especial de las solanaceas, la diferenciación bioquímica puede estar acompañada por una diferenciación estructural limitada, especialmente si no hay un aporte de peso fresco, que favorezca a la diferenciación celular.

Al parecer, la célula cultivada empieza a organizarse estructuralmente y hay un incremento en la producción de metabolitos secundarios, todo esto sucede al parecer por la disminución de la división celular. Ambos procesos parecen estar interrelacionados, y los cambios en la actividad metabólica secundaria, durante la transformación del explante en células cultivada y en planta regenerada, varia de un modo que refleja los cambios en la diferenciación estructural.

2.3.2.3 Edad de la Planta



Gran parte del éxito de cultivo de tejidos, esta en la edad del Explante que va a ser utilizado para los trabajos. La edad de la planta y el grado de diferenciación del tejido, muchas veces son están interrelacionados, y pueden producir efectos interactivos cundo se cultiva in vitro.

 Por ejemplo, según los experimentos realizados por Toivonen ty Kartha, en 1988, quienes trabajaron con Pinus glauca, descubrieron que las plantulas a las que se les extirpo los cotiledones 7 a 8 días luego de ser plantadas, formaban las primeras yemas adventicias antes que plantulas cuyas yemas fueron extirpadas luego de los 8 días. Así también la producción de yemas adventicias en explantes de hojas de Cucumis melo, mostraron mayor producción en los explantes que tenian un a tamaño entre 0.3 y 0.5mm los cuales tenían 14 días de plantados. Esta propiedad no tenían aquellos explantes que tenían  mas de 21 días.
La edad del explante pude clasificarse en cuatro clases:

«  Edad del órgano o de la planta desde que ha sido extraída: Es la edad biológica de la planta, es el tiempo que ha transcurrido desde que la planta comenzó como retoño o como  embrión.

«  Edad fisiológica o ontogenética: O fase de crecimiento. Incluye los conceptos de juvenilidad  y adulto.

«  El grado de diferenciación: Con este concepto, las partes mas jóvenes de la planta son células meristemáticas no diferenciadas. Teóricamente se dice que algunas plantas poseen las células meristematicas siempre en estado juvenil y que podrían vivir para siempre.

«  Periodo de cultivo: Es el tiempo desde que recién se instala el cultivo.

2.3.2.2 Fitosanidad


La Fitosanidad o Protección de Plantas, o como quiera que se le llame, es una rama de la agricultura encargada de mantener los cultivos en buen estado fitosanitario, mediante la lucha contra los organismos que constituyen plagas de estos, ya sea mediante medios químicos o biológicos, así como utilizando sistemas de señalización y pronóstico que eviten o disminuyan el uso indiscriminado de estos productos.
Lo más seguro haya sido que hombre desde que se empezó a acostumbrar a la vida sedentaria y por ende a la agricultura y ganadería como medio esencial de sustento, enseguida que comenzaron a existir extensiones más o menos grandes de plantaciones de monocultivo las plagas y enfermedades que hasta ese momento pudieron pasar inadvertidas comenzaron a darse a conocer y tomar protagonismo, dañando las plantas sembradas y para colmo los productos ya almacenado.

Esto sin duda debe haber puesto a aquellos hombres frente a un problema que sin saberlo los acompañaría para siempre. Enseguida debieron surgir innumerables formas de control de estos indeseables huéspedes, desde el brujo o sacerdote de la tribu, recoger y matar los insectos grandes o las hojas dañadas, aplicar cenizas o lo que se les ocurriera, hasta vencer o ser vencidos y era entonces cuando tenían que emigrar por el hambre o morir, este trauma nos acompaño hasta hace muy poco, cuando en el siglo pasado miles de irlandeses huyeron hacia todo el mundo, pero principalmente hacia los Estados Unidos por la plaga que azotó las plantaciones de patata en ese país, en ese caso fue el hongo Phytophtora infectans o tizón de la hoja, por suerte el desarrollo posterior de innumerables productos más o menos efectivos y la aplicación de manejos integrados posiblemente evitarán que estas catástrofes ocurran nuevamente.
Existen muchas formas de combatir alas plagas, algunas de estas son:
Lucha biotécnica: es aquella que utiliza sustancias naturales de origen orgánico o sintético que actúan sobre el comportamiento de los insectos causante de la plaga, sin producirles la muerte. Atrayentes, repelentes, esterilizantes, feromonas, elicitadores, antiapetentes,etc. 

Lucha física
: es aquella que utiliza métodos de radiaciones electromagnéticas, radiofrecuencias, producen calor en el interior de los tejidos principalmente se usan para provocar esterilidad, radiaciones de infrarrojo (acortarle o aumentarle la longitud del día para cambiarle el ciclo biológico y confusión de colores, y atrayente con placas engomadas. 

Lucha genética: la selección de variedades no solo se ha efectuado para mejorar la calidad y cantidad productiva de un cultivo, si no que además para obtener variedades resistentes a las diferentes condiciones ecológicas (sequía, heladas, iluminación,etc.), edáficas ( salinidad, cal, asfixia radicular, etc. ), enfermedades (hongos, bactérias, virus, etc.) e incluso insectos, este tipo de lucha al igual que la química se encuentra envuelta en serias controversias con los ecologistas, debido a la tranformación a las que son sometidas las plantas, insertando en su información cromósómica genes, de otras plantas o bacterias como Bacillus thuringiensis, para producir toxinas que maten o repelan a las plagas.

Prácticas culturales: son los métodos más antiguos de lucha contra las plagas, están basados en la acumulación de experiencias para impedir o aminorar los ataques de la plagas y enfermedades mediante la actuación de: época de plantación o siembra, recolección precoz, rotación de cosechs, utilización de cultivos cebo, labores culturales étc.


BIBLIOGRAFIA:

http://www.concitver.com/14_4fitosanidad.html